臨床生物化學/固定時間法（取樣法）
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前面已經提到，早期臨床實驗室測酶活性時常使用比色法，先讓酶與底物在一定溫度下作用一段固定的時間，然後停止酶反應，加入試劑進行化學反應呈色測出底物和產物的變化。由於比色法靈敏度較低，或由於手工操作不易控制好，常定在30分鐘左右。歷史上這類方法常被命名為「終點法」、「二點法」、「固定時間法」和「取樣法」。大多數文獻使用「固定時間法」。此命名指出了用這類方法測酶活性濃度，必須保證酶和底物在所選定的溫度下作用時間要很精確，否則將引起較大誤差。但「取樣法」的命名更具有特徵性。因它指出此類方法和下面將提到的另一類連續監測法相比較，最基本一點的是此類方法停止反應後才測底物或物的變化。很難進行連續監測，而另一類方法則不需停止酶反應，就可測定反應物的變化，很容易觀察到反應的整個過程。後一類方法開始於50年代，Warburg首先用分光光度計。在340nm處直接監測到反應物NADH的動態變化過程。由於不停止酶反應，不需添加其它呈色試劑。測定方法簡單，結果準確，逐步取代了「取樣法」成為目前測酶活性的主要方法。
由於經歷了一個發展過程，命名比較混亂而且大部分不甚確切，IFCC建議命名為「連續監測法」，不用目前廣為流行的「動態法」術語。其原因是目前測酶活性濃度方法都是基於化學反應。圖17-6是一個典型的化學反應過程。
圖17-6 動態和平衡概念的示意圖
可以看出整個反應過程，可以大致分為二個時期。一開始為動態期，化學反應按一定速度進行，反應物濃度隨時間而變化，且變化程度不斷變小，到一定時間。化學反應或者達到平衡，或者反應達到終點，此時反應速度為零，反應物濃度不變。最近IFCC文件按所用方法所測定的反應是在達到平衡前還是平衡後。分別命名為動態法或平衡法。一般文獻往往將後一類方法稱為終點法。
 測定酶活性濃度的兩大類方法 | 連續監測法與反應進程的分析  |
出自A+醫學百科 「臨床生物化學/固定時間法（取樣法）」條目 http://cht.a-hospital.com/w/%E4%B8%B4%E5%BA%8A%E7%94%9F%E7%89%A9%E5%8C%96%E5%AD%A6/%E5%9B%BA%E5%AE%9A%E6%97%B6%E9%97%B4%E6%B3%95%EF%BC%88%E5%8F%96%E6%A0%B7%E6%B3%95%EF%BC%89 轉載請保留此連結
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